Исследование роли Z-диск-ассоциированого белка филамина С в организации актинового цитоскелета мышечных клеток и регуляции уровня внутриклеточного кальция
Большие вызовы 2023
Генетика и биомедицина
Партнёры
  • НМИЦ им. В. А. Алмазова Минздрава России

  • ОЦ Сириус

Строение саркомера

Введение

Каждая мышечная клетка имеет в себе миофибриллы, которые состоят из саркомеров (функциональные единицы мышечных клеток). За сокращение мышечного волокна в саркомере отвечают белки актин и миозин. На миозине есть головки, которые передвигаются по нитям актина гребковыми движениями. Головки миозина прикрепляются к нити актина, сгибаются и хватаются в новом месте. Для осуществления этого процесса необходимо поддержание строгой упорядоченности актинового цитоскелета. Это осуществляется с помощью семейства белков филаминов.

Строение филамина С

Филамин С

Филамины— это семейство актин-связывающий белков, которые стабилизируют трехмерные сети F-актина, образуя гибкие молекулярные сшивки, Семейство содежит три гомологичных белка А, В, С. Филамины, А и В находятся во всех дифференцированных клетках позвоночных, филамин С ограничен мышечными клеткми, он локализован в области Z-диска саркомера, и связывает актив, в функциональном состоянии представляет собой димер.
Первое заболевание, связанное с мутацией в гене FLNC, было описано в 2005 году. Была идентифицирована нонсенс-мутация в области димеризационного домена FLNC, вызвавшая конечностно-поясную прогрессирующую мышечную дистрофию.

Миопатии


Миопатии – это группа мышечных заболеваний, характеризующихся нарушениями метаболизма и структуры поперечно-полосатой мышечной ткани.

Скелетно-мышечная миопатия составляет 19,8 до 25,1 случаев на 100 000 населения.

Кардиомиопатия развивается у 50-60 человек на 100 000 населения.


Одна из причин развития миопатий - мутации в гене структурного белка филамина С.

Механизмы молекулярного патогенеза миопатий практически не изучены.

Схема получения нокаутной линии

Цель


Изучение роли филамина С в молекулярных механизмах развития миопатии на клеточной модели, мышечных клетках линии С2С12 с нокаутом гена FLNC.

Задачи
  • 1
    Исследовать архитектуру актинового цитоскелета на разных стадиях дифференцировки мышечных клеток С2С12 с нокаутом гена FLNC.
  • 2
    Оценить экспрессию генов актин-связывающих белков и маркеров мышечной дифференцировки: филаминов А и В, миозинов в дифференцированных миотрубках.
  • 3
    Исследовать динамику внутриклеточной концентрации ионов кальция и амплитуду депо-опосредованного входа кальция.
План работы
  • 1

    Культуральная работа по ведению миобластов и получению дифференцированных миотрубок линии С2С12 контрольных и с нокаутом по гену филамина С

  • 2

    Визуализация актинового цитоскелета в миобластах и дифференцированных миотрубках методом цитохимической окраски

  • 3

    Выделение РНК из миобластов и дифференцированных миотрубок с помощью фенола

  • 4

    Анализ экспрессии генов интереса методом ПЦР с обратной транскрипцией

  • 5

    Оценка уровня белков-маркеров миогенеза методом Вестерн-блоттинга

  • 6

    Сравнение динамики внутриклеточного уровня ионов кальция в контрольных и нокаутных клетках методом кальциевого имиджинга

Дифференцировка клеток


По фотографиям, которые мы сделали, можно увидеть, что клетки WT раньше начинают вытягиваться и сливаться, образуя миотрубки, а у клеток, в которых отсутствует филамин С, процесс дифференцировки, вероятно, проходит менее эффективно, и на 3 день они все еще похожи на миобласты.


Этапы дифференцировки клеток линии С2С12 с получением миотрубок.
WT - клетки дикого типа;

FLNCko - клетки с нокаутом по гену FLNC.

Визуализация актинового цитоскелета


Актин обеспечивает механическую поддержку, определяет форму клетки и в мышечных клетках образует тонкие филаменты саркомеров.

У миобластов с нокаутом филамина С имеются более крупные гранулы актина и в большем количестве, чем у дикого типа.

В дифференцированных клетках дикого типа визуализируется актиновый цитоскелет по мышечному типу (вытянут вдоль миотрубок), чего не наблюдается в филаминовых нокаутах.


Для визуализации актинового цитоскелета был использован метод цитохимического окрашивания с использованием фаллоидина с флуоресцентной меткой Alexa Fluor 488, ядра были окрашены DAPI.
.

Выделение РНК


Выделение РНК было выполнено стандартным методом фенольной экстракции. Концентрация РНК была измерена с помощью NanoPhotometer (IMPLEN). С помощью электрофореза в агарозном геле была выполнена проверка качества РНК проб.

Результаты эксперимента

Анализ экспрессии генов интереса


В процессе мышечной дифференцировки, как на начальных, так и на поздних стадиях наблюдается увеличение экспрессии генов филаминов А и В в нокаутных клетках. Мы полагаем, что это компенсаторная реакция в ответ на отсутствие филамина С.
В контрольных клетках значительно выше экспрессия генов, задействованных в мышечной дифференцировке, чем в нокаутных клетках.

Анализ экспрессии генов интереса был выполнен с помощью метода ПЦР с обратной транскрипцией в реальном времени.

Оценка уровня белков-маркеров миогенеза.


В нокаутных клетках наблюдается очень низкий уровень белка филамина С на всех этапах дифференцировки, что говорит о релевантности модели.
В недифференцированных миобластах отсутствуют тяжелые цепи миозина, как в контроле, так и в нокауте. Миозины появляются при индукции дифференцировки, и их содержание растет в процессе дифференцировки, при этом в контрольных клетка сильнее, чем в нокаутных.

Оценка уровня белка выполнялась методом Вестерн-блот. Электрофорез проводился в 7,5% полиакриламидном геле, детектирование белка с помощью антител выполнялось на нитроцеллюлозной мембране.
.

Кальциевый имиджинг


Динамика депо-зависимого кальциевого входа и объём кальциевого депо регистрировались методом прижизненной эпифлуоресцентной микроскопии (кальциевый имиджинг) с использованием кальций связывающего зонда Fluo-4AM.

•SERCA – (Sarco/endoplasmic Reticulum Ca-ATPase) Ca-АТФаза сарко/эндоплазматического ретикулума. С помощью энергии гидролиза АТФ перекачивает Са2+ из цитоплазмы в СПР.
•Тапсигаргин (10мкМ, 10мин) – блокатор Са-АТФазы ретикулума.
Блокирование SERCA приводит к выходу Са2+ из СПР и активации депо-опосредованного входа Са2+.
•EGTA (10мкМ) – хелатор Са2+.
Добавление EGTA во внешний раствор (0 mM Са2+) устраняет депо-зависимый вход Са2+.

Смена внешнего бескальциевого раствора на кальций-содержащий обеспечивает депо-зависимый вход Са2+.

Проточная камера для кальциевого имиджинга

Депо-опосредованный вход кальция


•STIM – трансмембранный белок на поверхности СПР (саркоплазматический ретикулум);
•Orai – Са2+-проницаемый канал на наружной мембране клетки;
Уменьшение концентрации Са2+ в СПР меняет конформацию белка STIM и он взаимодействует с каналом Orai, активируя и открывая его.
Нарушение архитектуры актинового цитоскелета может изменить это взаимодействие.
Выводы

Нокаут гена FLNC замедляет дифференцировку клеток С2С12

Отсутствие белка филамина С вызывает образование актин-содержащих белковых агрегатов в недифференцированных мышечных клетках

Отсутствие белка филамина С вызывает компенсаторное усиление экспрессии генов FLNA и FLNB в процессе мышечной дифференцировки

При нокауте гена филамина С снижается экспрессия основных маркеров мышечной дифференцировки на уровне мРНК и белка

Отсутствие белка филамина С увеличивает кальциевый ответ дифференцированных клеток при ингибировании Са-АТФазы тапсигаргином и уменьшает амплитуду депо-опосредованного входа Са2+

Проект в числах
  • 21
    Дни интенсивной работы
  • 8
    Человек в команде
  • 34
    Сломанных стёкол
Преподаватели
  • Алексей Валерьевич Карпушев
    Доцент кафедры Биологии клетки и гистологии ИМО ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова, к.б.н.
    akarpushev@yandex.ru
    +79632442231
  • Елена Владимировна Игнатьева

    научный сотрудник ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова, к.б.н.

    lefutr@mail.ru

    Telegram @luchelenai

  • Екатерина Сергеевна Клименко
    Младший научный сотрудник
    ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова
    bymalvina@gmail.com
    Telegram @bymalvina
  • Валерия Борисовна Михайлова
    Лаборант-исследователь
    ФГБУ НМИЦ им. В.А. Алмазова

    hastar.teerend@yandex.ru

    Telegram @KrekSkrek

Состав команды
  • Наборщикова Карина Сергеевна
    karina.naborshchikova.06@bk.ru
    Telegram @Kaleriyans
  • Бабушкин Александр Александрович
    babushkinchipik@gmail.com
    Telegram @GoldenCobra23
  • Ряховская Ксения Владимировна
    rkv18032006@mail.ru
    Telegram @rkv_rkv_rkv
  • Резниченко Вероника Борисовна
    33olive.oil@gmail.com
    Telegram @strawberry_berry_ry

Выражаем благодарность

  • Лактюшкину Виктору Сергеевичу
    за помощь в работе с дорогостоящим оборудованием
  • Демидову Олегу Николаевичу
    за организацию исследовательского процесса
  • Ворониной Елене Николаевне
    за сопровождение на протяжении всей программы
+79632442231
akarpushev@yandex.ru